摘要：本文詳細闡述了大巖桐遺傳轉化體系的構建過程以及 LEA 蛋白基因在其中的整合與表達。通過對轉化方法、篩選條件等的優化，成功建立了穩定的遺傳轉化體系，并將 LEA 蛋白基因導入大巖桐，為研究大巖桐的抗逆性機制和基因功能提供了有力的工具。研究結果對于觀賞植物的遺傳改良和抗逆品種選育具有重要意義。

一、引言

大巖桐（Sinningia speciosa）作為一種觀賞價值的花卉，在花卉市場中占據重要地位。然而，其在生長過程中易受到各種環境脅迫的影響，如干旱、高鹽等，這在一定程度上限制了它的栽培范圍和觀賞品質。晚期胚胎發生富集蛋白（LEA 蛋白）在植物抵御非生物脅迫過程中發揮著關鍵作用。建立大巖桐的遺傳轉化體系并導入 LEA 蛋白基因，對于提高大巖桐的抗逆性、培育優良品種具有深遠的意義。同時，這也為深入研究大巖桐基因功能和分子生物學機制提供了一個重要的平臺。

二、材料與方法

（一）植物材料

選用健康、生長旺盛的大巖桐幼嫩葉片作為外植體來源。將大巖桐植株培養在溫室中，保持適宜的溫度（20 - 25℃）、濕度（60 - 70%）和光照條件（16 小時光照 / 8 小時黑暗）。

（二）菌株與質粒

農桿菌菌株
選用具有高效侵染能力和良好穩定性的農桿菌菌株，如 LBA4404。該菌株攜帶經過改造的 Ti 質粒，其中包含用于將目的基因整合到植物基因組的 T - DNA 區域。

質粒構建
將 LEA 蛋白基因克隆到含有合適啟動子（如 CaMV 35S 啟動子）和篩選標記基因（如卡那霉素抗性基因 nptII）的植物表達質粒上。通過基因工程技術對質粒進行構建和驗證，確保目的基因和篩選標記基因的正確連接和表達。

（三）外植體預處理

將采集的大巖桐幼嫩葉片先用流水沖洗 30 分鐘，然后在超凈工作臺上用 70% 乙醇浸泡 30 - 60 秒，再用含有 0.1% 溶液消毒 8 - 10 分鐘，最后用無菌水沖洗 4 - 5 次，以去除表面的微生物，同時盡量減少對葉片細胞活力的損傷。

（四）農桿菌介導的遺傳轉化

農桿菌培養與活化
從 - 80℃冰箱中取出保存的農桿菌菌株，在含有相應抗生素（如利福平、慶大霉素等）的 LB 固體培養基上劃線培養，28℃倒置培養 2 - 3 天。挑取單菌落接種到含有相同抗生素的 LB 液體培養基中，28℃、200rpm 振蕩培養至 OD???值達到 0.6 - 0.8。

侵染液制備
將活化后的農桿菌培養液離心（5000rpm，10 分鐘），棄去上清液，用液體共培養培養基（含有一定濃度的乙酰丁香酮等誘導物質）重懸農桿菌，使 OD???值調整為 0.2 - 0.4。

侵染與共培養
將預處理后的大巖桐葉片外植體放入侵染液中，在真空條件下處理 10 - 15 分鐘，然后在 28℃、黑暗條件下振蕩培養 30 - 45 分鐘，使農桿菌充分接觸外植體。侵染完成后，用無菌濾紙吸干外植體表面多余的侵染液，將其轉移到共培養培養基（含有適宜濃度的生長素、細胞分裂素和乙酰丁香酮等）上，在 25℃、黑暗條件下共培養 2 - 3 天。

（五）篩選與再生培養

脫菌處理
共培養結束后，將外植體轉移到含有頭孢噻肟鈉（濃度為 200 - 300mg/L）的抑菌培養基上，在 25℃、光照條件下培養 1 - 2 周，以抑制農桿菌的生長，同時促進外植體的恢復。

篩選培養
將脫菌后的外植體轉移到含有卡那霉素（篩選濃度根據預實驗確定，一般為 50 - 100mg/L）的篩選培養基上，該培養基同時含有適宜濃度的生長素、細胞分裂素，以促進愈傷組織的形成和芽的分化。每 2 - 3 周更換一次培養基，持續篩選 4 - 6 周，觀察外植體的生長情況，篩選出具有卡那霉素抗性的愈傷組織和芽。

生根培養
當篩選出的抗性芽長至 2 - 3cm 時，將其切下，轉移到生根培養基（含有較低濃度的生長素和適量的蔗糖）上，在 25℃、光照條件下培養，直至根系發育完整。

（六）分子檢測

基因組 DNA 提取
采用 CTAB 法或商業 DNA 提取試劑盒從轉基因和非轉基因大巖桐植株的葉片中提取基因組 DNA。通過瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計檢測 DNA 的質量和濃度。

PCR 檢測
以提取的基因組 DNA 為模板，設計特異性引物對 LEA 蛋白基因和篩選標記基因進行 PCR 檢測。PCR 反應體系包括模板 DNA、引物、dNTPs、Taq 酶和緩沖液等。反應條件為：94℃預變性 5 分鐘，然后進行 30 - 35 個循環（94℃變性 30 秒，55 - 60℃退火 30 秒，72℃延伸 1 - 2 分鐘），最后 72℃延伸 10 分鐘。通過瓊脂糖凝膠電泳觀察 PCR 產物，判斷目的基因是否整合到植物基因組中。

Southern 雜交檢測
對于 PCR 陽性的植株，進一步進行 Southern 雜交檢測。提取基因組 DNA，用適當的限制性內切酶消化，電泳分離后轉移到尼龍膜上。制備標記的 LEA 蛋白基因探針，通過雜交和顯色反應，確定目的基因在基因組中的拷貝數和整合位點。

Northern 雜交檢測
提取轉基因和非轉基因大巖桐植株葉片的總 RNA，進行 Northern 雜交檢測。將 RNA 電泳分離后轉移到尼龍膜上，用標記的 LEA 蛋白基因探針進行雜交，檢測目的基因在轉錄水平的表達情況。

Western 雜交檢測
提取轉基因和非轉基因大巖桐植株葉片的總蛋白，通過 SDS - PAGE 電泳分離蛋白，轉膜后用特異性的 LEA 蛋白抗體進行 Western 雜交檢測，以確定目的基因在翻譯水平的表達情況和蛋白表達量。

三、結果

（一）外植體的生長與分化

經過農桿菌侵染和篩選培養后，部分大巖桐葉片外植體在篩選培養基上形成了愈傷組織，并逐漸分化出芽。在生根培養基上，抗性芽能夠正常生根，形成完整的轉基因植株。非轉基因外植體在含有卡那霉素的篩選培養基上逐漸變黃、死亡，表明篩選體系有效。

（二）分子檢測結果

PCR 檢測
對再生植株進行 PCR 檢測，部分植株能夠擴增出與目的基因和篩選標記基因大小相符的條帶，初步表明 LEA 蛋白基因和篩選標記基因已整合到這些植株的基因組中。

Southern 雜交檢測
Southern 雜交結果顯示，PCR 陽性植株中目的基因在基因組中的整合情況存在差異，有的植株為單拷貝整合，有的植株為多拷貝整合，進一步確定了基因的整合方式。

Northern 雜交檢測
Northern 雜交結果表明，轉基因植株中 LEA 蛋白基因在轉錄水平有表達，而在非轉基因植株中未檢測到相應的轉錄產物，證明目的基因在轉基因植株中成功轉錄。

Western 雜交檢測
Western 雜交檢測到轉基因植株中有與 LEA 蛋白特異性抗體結合的蛋白條帶，且蛋白表達量在不同轉基因植株之間存在一定差異，說明目的基因在轉基因植株中實現了翻譯表達。

四、討論

（一）遺傳轉化體系的優化

在建立大巖桐遺傳轉化體系過程中，發現外植體的選擇、農桿菌侵染條件、共培養和篩選條件等都對轉化效率有重要影響。幼嫩葉片作為外植體具有較高的細胞活力和再生能力，但對外界處理也較為敏感，消毒和侵染過程需要嚴格控制條件。農桿菌侵染時，侵染液的濃度、侵染時間和真空處理等參數的優化可以提高農桿菌與外植體的相互作用效率。共培養和篩選培養基中添加的乙酰丁香酮、生長素、細胞分裂素和篩選標記基因的濃度等都需要經過多次試驗來確定最佳組合，以平衡轉化效率和減少假陽性植株的出現。

（二）LEA 蛋白基因的功能研究

通過對轉基因大巖桐植株中 LEA 蛋白基因的表達分析，結合對植株抗逆性的初步觀察，發現 LEA 蛋白基因的導入可能增強了大巖桐對干旱等脅迫的耐受性。然而，其具體的抗逆機制還需要進一步深入研究，如通過生理生化指標測定（如脯氨酸含量、抗氧化酶活性等）和在不同脅迫條件下的表型分析來全面解析 LEA 蛋白基因在大巖桐中的功能。

（三）應用前景與展望

本研究建立的大巖桐遺傳轉化體系和導入的 LEA 蛋白基因為觀賞植物的遺傳改良提供了一個成功的范例。未來可以利用該體系導入更多具有優良性狀的基因，如花色相關基因、抗病基因等，培育出具有更高觀賞價值和抗逆性的大巖桐新品種。同時，該研究方法也可以為其他觀賞植物的基因工程研究提供參考，推動觀賞植物產業的發展。

五、結論

本文成功建立了大巖桐遺傳轉化體系，并將 LEA 蛋白基因導入大巖桐植株中。通過分子檢測驗證了目的基因在基因組中的整合、轉錄和翻譯表達。該研究為大巖桐的抗逆性改良和基因功能研究提供了重要的技術平臺和實驗依據，對觀賞植物的遺傳育種具有重要意義。在后續研究中，可進一步優化體系和深入探究 LEA 蛋白基因的功能，以實現更廣泛的應用價值。