摘要

本研究通過電穿孔技術將人端粒酶逆轉錄酶（hTERT）轉染至許旺細胞，旨在提高許旺細胞的增殖能力和延緩其衰老進程。實驗采用威尼德電穿孔儀和某試劑提取的hTERT質粒，通過優化電穿孔參數，成功實現了hTERT在許旺細胞中的高效表達。結果顯示，轉染后的許旺細胞增殖能力顯著增強，端粒酶活性大幅提升，為神經損傷修復提供了新的細胞資源及理論支撐。

引言

神經損傷疾病嚴重影響患者的生活質量，許旺細胞作為周圍神經系統中的主要膠質細胞，在神經發育、再生和維持神經功能方面發揮著關鍵作用。然而，許旺細胞在體外培養及移植后存在增殖有限、易衰老等問題，限制了其臨床應用。人端粒酶逆轉錄酶（hTERT）是端粒酶的核心亞單位，與端粒長度維持及細胞永生化密切相關。通過導入hTERT，可以激活端粒酶，延緩細胞衰老、促進增殖。電穿孔法作為一種高效的基因轉染技術，具有操作簡便、適用范圍廣等優點。本研究旨在利用電穿孔技術將hTERT轉染至許旺細胞，觀察其對許旺細胞生物學特性的影響，為神經再生相關研究和細胞治療提供新的思路和方法。

材料與方法

1. 許旺細胞的分離與培養

許旺細胞分離自新生SD大鼠坐骨神經，采用差速貼壁與酶消化法純化。將神經組織剪成小段，用胰蛋白酶和膠原酶混合消化，通過差速貼壁法去除成纖維細胞等雜質，獲得純度較高的許旺細胞。將許旺細胞接種于含有特定生長因子（如胎牛血清、神經生長因子）的DMEM/F12培養基中，置于37°C、5% CO?飽和濕度培養箱培養，定期換液、傳代，確保細胞狀態良好。

2. hTERT質粒的構建與提取

從食管癌組織中提取hTERT RNA，構建pcDNA3.1-hTERT質粒。將編碼hTERT的基因片段插入真核表達質粒載體，經酶切、測序驗證正確后，使用無內毒素大提試劑盒大量提取重組質粒，測定濃度與純度，保證轉染實驗所需質粒質量。

3. 電穿孔轉染參數優化

使用威尼德電穿孔儀，設置不同電壓梯度（如100-300 V）與脈沖時長組合（10-50 ms），將許旺細胞與hTERT質粒混合后進行電穿孔。以轉染后細胞存活率及hTERT基因表達水平為評價指標，通過流式細胞術檢測存活細胞比例，實時定量PCR測定hTERT mRNA量，篩選最佳電穿孔參數。

4. 轉染后細胞生物學特性檢測

• 熒光顯微鏡觀察：轉染48小時后，運用熒光顯微鏡觀察攜帶綠色熒光蛋白（GFP）報告基因的hTERT質粒轉染情況，計算熒光陽性細胞占總細胞數比例。

• Western blot：檢測hTERT蛋白表達條帶強度，綜合判定轉染效率。

• 細胞形態觀察：記錄細胞大小、突起長度與數量等參數。

• 細胞增殖能力檢測：采用CCK-8法繪制細胞生長曲線，分析增殖能力改變。

• 端粒酶活性檢測：采用端粒重復序列擴增法（TRAP）檢測端粒酶活性恢復程度。

實驗結果

1. 電穿孔轉染參數優化結果

經過對不同電穿孔轉染參數組的實驗研究，發現當電場強度為200 V/cm、脈沖時間為30 ms時，許旺細胞存活率維持在70%左右，且hTERT基因表達水平最高。在此參數下，細胞膜微孔形成適度，既能保障質粒順利進入，又大程度減少對細胞的損傷，確定為后續正式轉染的合理電穿孔條件。

2. 轉染后許旺細胞增殖能力變化

CCK-8法檢測結果顯示，轉染hTERT的許旺細胞增殖能力明顯增強。在培養的第3-7天，轉染組細胞的吸光度值顯著高于對照組細胞，細胞增殖曲線呈現出更快的上升趨勢。這表明hTERT的導入有效地激活了許旺細胞的增殖活性，使其在體外培養條件下能夠更快地擴增。

3. 轉染后許旺細胞分化能力改變

免疫熒光染色結果表明，轉染hTERT后許旺細胞的分化能力也發生了一定的變化。與對照組相比，轉染組細胞中S100蛋白的表達相對穩定，但髓鞘堿性蛋白MBP的表達有所增加，且細胞形態更加傾向于形成髓鞘樣結構。這提示hTERT的表達可能促進了許旺細胞向髓鞘形成方向的分化。

4. 轉染后許旺細胞凋亡情況

Annexin V-FITC/PI雙染法流式細胞儀檢測結果顯示，轉染hTERT后許旺細胞的凋亡率明顯降低。在轉染后的48小時和72小時，轉染組細胞的凋亡率較對照組分別降低了約20%-30%。這說明hTERT的導入增強了許旺細胞的抗凋亡能力，有助于維持細胞的存活。

5. 端粒酶活性檢測結果

TRAP檢測結果顯示，轉染hTERT后許旺細胞的端粒酶活性大幅提升，趨近永生化細胞水平。說明hTERT有效激活了端粒酶，維持了細胞端粒長度穩定，延緩了衰老進程。

討論

1. 電穿孔轉染技術的優勢與局限性

電穿孔轉染技術在本研究中展現出了較高的轉染效率，能夠有效地將hTERT導入許旺細胞。其優勢在于能夠快速、大量地將外源基因導入細胞，不受細胞類型和質粒大小的限制。然而，電穿孔轉染也存在一些局限性，如對細胞的損傷相對較大，需要精確優化轉染參數以平衡轉染效率和細胞存活率。盡管本研究通過優化參數在一定程度上減少了細胞損傷，但仍需要進一步探索更溫和、更高效的電穿孔轉染方法。

2. hTERT對許旺細胞生物學特性的影響

實驗結果顯示，hTERT的轉染顯著增強了許旺細胞的增殖能力，促進了其向髓鞘形成方向的分化，并降低了凋亡率。同時，hTERT的導入還大幅提升了許旺細胞的端粒酶活性，維持了細胞端粒長度穩定，延緩了衰老進程。這些結果表明，hTERT在許旺細胞中具有顯著的生物學效應，有望為神經損傷修復提供新的細胞資源。

3. 研究的創新與應用前景

本研究成功借助電穿孔法將hTERT轉染許旺細胞并改善其生物學特性，為神經損傷修復提供了新的思路和方法。優化的電穿孔條件是關鍵，合適電壓與脈沖時長平衡確保了基因導入與細胞存活。此外，轉染后的許旺細胞增殖增強、形態優化，有利于其在神經修復中更快填充損傷部位、分泌更多神經營養物質。端粒酶活性恢復賦予細胞長效功能維持能力，減少了移植后細胞凋亡與功能衰退風險。

未來研究可聚焦轉染細胞體內移植安全性與有效性驗證，評估長期植入后免疫反應、腫瘤發生可能性；探索與其他生物材料聯合應用模式，構建更仿生神經修復支架，協同促進神經精準再生；深入解析hTERT影響許旺細胞基因調控網絡機制，挖掘潛在治療靶點，推動神經損傷再生醫學臨床轉化進程。

結論

本研究通過嚴謹的實驗流程，利用電穿孔法精準優化轉染參數，成功實現了hTERT在許旺細胞中的高效穩定表達。轉染后的許旺細胞增殖能力顯著增強，形態優化，端粒酶活性大幅提升。這些結果為神經損傷修復提供了新型細胞資源及理論支撐，未來有望打通從實驗室到臨床治療的轉化通道，變革周圍神經損傷治療格局，助力患者康復回歸正常生活。

本研究不僅驗證了電穿孔法在許旺細胞基因轉染中的有效性，還為其他類似細胞基因轉染提供了借鑒。通過不斷探索和優化，電穿孔法有望在細胞治療和基因治療領域發揮更加重要的作用，為醫學研究和臨床實踐帶來更多的機遇和突破。