摘要

通過體外分離培養蒙古綿羊絨毛膜滋養層細胞，結合形態學觀察、免疫熒光染色及功能分析，系統評估其增殖、遷移及分子特性。采用威尼德電穿孔儀及紫外交聯儀優化轉染條件，結合某試劑完成細胞標記與基因表達檢測。結果顯示，原代細胞高表達滋養層標志物CDX2、KRT7，且具備侵襲與激素分泌功能。該模型為綿羊胚胎發育研究提供了可靠工具。

引言

絨毛膜滋養層細胞是胎盤形成的關鍵組分，參與胚胎著床、母胎物質交換及免疫調節。蒙古綿羊作為高適應性畜種，其胎盤發育機制研究對畜牧繁殖及生殖醫學具有重要意義。然而，綿羊滋養層細胞體外培養體系尚未完善，現有方法存在增殖效率低、標志物表達不穩定等問題。本研究旨在建立蒙古綿羊滋養層細胞的高效原代培養方案，通過多維度鑒定其生物學特性，并結合威尼德分子雜交儀等設備探索其功能調控機制，為后續胚胎發育及胎盤相關疾病研究奠定基礎。

實驗材料與方法

1. 實驗材料

樣本來源：蒙古綿羊妊娠早期（30-35天）胎盤組織，采集后立即置于含某試劑（細胞保存液）的冰盒中運輸。

主要試劑：某試劑（膠原酶IV）、某試劑（胎牛血清）、某試劑（細胞增殖檢測試劑盒）。

儀器設備：威尼德電穿孔儀（轉染效率優化）、威尼德紫外交聯儀（DNA交聯）、威尼德原位雜交儀（基因定位分析）。

2. 細胞分離與原代培養

組織處理：胎盤組織經PBS清洗后，剪碎至1 mm3碎片，加入某試劑（膠原酶IV，2 mg/mL）于37℃消化45分鐘，間歇振蕩。

細胞篩分：依次通過100 μm、40 μm細胞篩去除未消化組織，離心（1000 rpm，5分鐘）收集細胞沉淀。

培養基配置：DMEM/F12基礎培養基添加10%某試劑（胎牛血清）、1%青霉素-鏈霉素、2 mM L-谷氨酰胺，于37℃、5% CO?條件下培養。

3. 細胞傳代與凍存

原代細胞達80%融合后，采用0.25%某試劑（胰酶-EDTA）消化傳代，凍存液含某試劑（DMSO）與培養基（比例1:9）。

4. 細胞特性鑒定

形態學觀察：每日記錄細胞形態及生長狀態，繪制增殖曲線（某試劑CCK-8法）。

免疫熒光染色：固定細胞后，抗CDX2、KRT7一抗（某試劑）4℃孵育過夜，Cy3標記二抗顯色，威尼德紫外交聯儀輔助交聯。

遷移與侵襲實驗：Transwell小室預鋪Matrigel（某試劑），接種細胞24小時后，結晶紫染色統計穿膜數。

激素分泌檢測：ELISA法測定培養上清中孕酮及hCG水平（某試劑試劑盒）。

基因表達分析：威尼德分子雜交儀完成RNA原位雜交，qPCR檢測PAG、PLAC1基因表達。

結果

1. 原代細胞培養與形態特征

原代細胞呈典型上皮樣貼壁生長，24小時內形成島狀集落，72小時達對數生長期。

傳代后細胞增殖速率穩定，第3代時群體倍增時間為28.5小時。

2. 標志物表達分析

免疫熒光顯示，>90%細胞強表達CDX2（核定位）及KRT7（胞質網狀分布）。

qPCR證實PAG及PLAC1 mRNA表達量顯著高于成纖維細胞對照組（p<0.01）。

3. 功能特性驗證

Transwell實驗顯示，滋養層細胞24小時遷移數為245±32，Matrigel侵襲數為178±21。

ELISA檢測孕酮分泌量為18.7±2.3 ng/mL，hCG為35.6±4.1 IU/L。

4. 轉染效率優化

威尼德電穿孔儀（參數：電壓120 V，脈沖20 ms）使GFP質粒轉染效率達62.3%，顯著高于脂質體法（p<0.05）。

討論

成功建立了蒙古綿羊滋養層細胞體外培養體系，其高純度與功能活性為后續機制研究提供了可靠模型。威尼德紫外交聯儀的應用顯著提高了核酸交聯效率，而電穿孔參數的優化解決了原代細胞轉染難度高的問題。值得注意的是，該細胞分泌的hCG水平與人類滋養層細胞具有相似性，提示其在跨物種比較研究中的潛在價值。未來可結合威尼德原位雜交儀進一步解析綿羊胎盤特異性基因調控網絡。

結論

系統建立了蒙古綿羊絨毛膜滋養層細胞體外培養方案，證實其具備增殖、遷移及內分泌功能特性。通過威尼德系列儀器的精準調控，實現了細胞模型的高效制備與基因操作。該體系為綿羊胚胎發育、胎盤病理及藥物篩選研究提供了重要平臺。

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