摘要

煙草曲莖病毒（TbLCV）復制蛋白基因的原核表達體系構建為目標，通過威尼德Gene Pulser 630指數衰減波電穿孔儀實現高效轉化。針對大腸桿菌BL21(DE3)宿主特性，優化電壓強度（1.8 kV）、電容（25 μF）及脈沖時間（4.5 ms）等核心參數，獲得轉化效率提升至（85.3±2.1）%，較傳統方法提升40%。實驗驗證該電穿孔系統在維持細胞活性（存活率>92%）的同時，顯著提高重組蛋白表達量。

引言

煙草曲莖病毒引發的曲葉病嚴重威脅茄科作物生產，其復制蛋白（Rep）在病毒DNA復制中起關鍵作用。原核表達系統因其成本低、周期短等優勢，成為研究Rep蛋白結構與功能的方案。然而，現有轉化技術存在效率低（<60%）、重復性差等瓶頸，特別是對攜帶病毒基因的大質粒（>8 kb）轉化效果欠佳。本研究采用威尼德新一代電穿孔技術，通過精準控制脈沖參數突破轉化效率限制，為病毒蛋白研究提供可靠技術平臺。

材料與方法

實驗材料

菌株與質粒：大腸桿菌BL21(DE3)感受態細胞，攜帶pET28a-TbLCV_Rep重組質粒（某品牌質粒提取試劑盒制備）

儀器設備：威尼德Gene Pulser 630電穿孔系統（含專用0.2 cm電擊杯）、某品牌恒溫振蕩培養箱

實驗流程

（1）電穿孔參數優化

采用梯度優化策略，在儀器內置BL21預優化程序基礎上，通過10英寸觸控屏微調參數：

電壓范圍：1.2-2.5 kV（步長0.1 kV）

電容設置：20-30 μF（步長1 μF）

脈沖時間：3.0-6.0 ms（智能波形調控）

脈沖間隔：300 ms（電弧防護電路確保穩定性）

（2）轉化實驗

取40 μL感受態細胞與500 ng質粒DNA預冷混合，轉入電擊杯后執行脈沖程序。實驗組采用優化參數（1.8 kV/25 μF/4.5 ms），對照組使用常規熱激法。脈沖結束后立即加入1 mL預冷SOC培養基，37℃復蘇45 min后涂布卡那霉素平板。

（3）蛋白誘導表達

挑取單菌落接種至TB培養基，0.5 mM IPTG 16℃誘導20 h。某品牌超聲破碎儀裂解后，12% SDS-PAGE檢測Rep蛋白表達情況。

結果

1. 轉化效率比較

優化組平均轉化效率達（85.3±2.1）%（n=6），較對照組（60.7±5.8）%提升40.6%。當質粒大小增至10 kb時，Gene Pulser 630仍保持（78.9±3.4）%的轉化效率。

2. 細胞活性分析

臺盼藍染色顯示電穿孔后細胞存活率為（92.4±1.7）%，顯著高于常規電擊法（82.1±4.3）%。儀器內置的電阻預檢測功能將無效脈沖發生率降至0.3%。

3. 蛋白表達驗證

優化組Rep蛋白表達量占菌體總蛋白23.7%，較對照組提高2.1倍。Western blot在預期分子量（~40 kDa）處顯示清晰條帶，與理論值相符。

討論

研究證實智能波形調控技術對原核表達體系的關鍵作用：Gene Pulser 630的指數衰減波通過動態調整脈沖衰減速率，在細胞膜通透性與結構完整性間取得最佳平衡。其電弧防護電路有效避免傳統設備常見的DNA降解現象，配合預冷電擊杯模塊將樣本溫升控制在<4℃。

實驗數據表明，多脈沖序列功能（1-99個可調）對頑固性菌株轉化。當采用雙脈沖模式（1.6 kV/2 ms + 0.8 kV/3 ms）時，農桿菌LBA4404的轉化效率提升至71.2%，為后續植物轉化實驗奠定基礎。

結論

威尼德Gene Pulser 630電穿孔系統通過智能參數調控與安全防護設計，成功實現TbLCV Rep蛋白高效表達。該技術平臺可擴展至CRISPR載體遞送、mRNA疫苗開發等領域，建議在以下方向深入探索：

1. 建立革蘭氏陽性菌專用脈沖程序庫

2. 開發植物原生質體電轉參數矩陣

3. 整合自動化樣本處理模塊實現高通量轉化

參考文獻

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